葡萄果皮花色素的提取及其理化性质
3期
杨夫臣等:葡萄果皮花色素的提取及其理化性质
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醇)提取效率最高,其次是A(95%乙醇-4.7%盐酸)、
B(1%盐酸-无水乙醇)。相同条件下,提取效率甲
醇>乙醇>水;提取液A、B、C、D间提取效率的差异主要是由于各提取液的pH值不同,pH值低提取效率就高;提取液D虽为乙醇,但是D的pH值(pH5)大于F(水)的pH值(pH2),导致了D的提取效率低于F,说明提取花色素要选择合适的提取液和调节溶液的pH值。考虑到甲醇的毒性,最后确定宜用
A、B做提取液。本研究选用B(1%盐酸-无水乙醇)作提取液(提取液B与A间提取效率差异性不显
著,且B较A易配制,因此选用B)。
图
3
不同提取剂里葡萄果皮花色素的吸收光谱曲线
2.2提取液用量的确定
由图2可知,以1%盐酸-无水乙醇为提取液,
Fig.3Absorptionspectraofanthocyaninfromgrapepeelin
differentextractant
果皮与提取液比例为1∶1时,花色素提取率较低,当比例为1∶5时,提取率显著增大,但随着提取液用量的增加,提取率变化不是很明显。从节约成本、提高利用率考虑,葡萄果皮质量与提取液体积的比例宜为本试验选用比例为1∶1∶5~1∶10。10(在加提取液时,提取液量少,不能完全浸没果皮粉末,需经常摇动试管;而提取液量多,能完全浸没果皮粉末,摇动试管次数少,因此选料液比1∶10)。
来的50%左右;当pH≥9时,花色素的特征颜色基本消失,呈蓝绿或蓝紫色。说明溶液的pH值对色素稳定性影响非常明显,主要是由于花色素的分子结构发生了转变[2]。为了使色素溶液保持正常的颜色,应该使溶液的pH值维持在2~3。
表1
溶液pH值对花色素稳定性影响
吸光度值
Table1EffectofwaterpHonthestabilityofanthocyanin
pH2
34567911
颜色
Color
紫红Purple-red紫红Purple-red
浅紫红Lightpurple-red浅紫红Lightpurple-red浅紫红Lightpurple-red浅红Lightred
浅蓝紫Lightblue-purple蓝绿Blue-greenAbsorbance0.713a0.528bc0.488c0.356f0.381e0.409d0.507bc0.426d
*注:同字母间差异不显著,P=0.01水平。
Note:Valuessharingthesamelettersarenotsignificantlydifferent.Lettersshowedcorrelationsignificanceat0.01level.
图2葡萄果皮花色素提取液不同用量的提取效率
2.3.3光照和温度对花色素稳定性影响光照单因
Fig.2Extractionefficiencyofdifferentextractant
volumeonanthocyaninfromgrapepeel
素对花色素影响:随着时间延长,各不同处理的花色素都呈现降低趋势,在避光和室内自然光下花色素变化很小,性质表现稳定,而在室外阳光下,花色素含量降到原来一半的时间(即半衰期)不到5h,色素溶液颜色明显变浅(图4-A)。温度对花色素影响:在避光下72h,加热温度≤60℃对花色素影响不是很明显,当温度≥70℃时,花色素降低比较明显,但溶液颜色变化不明显(图4-B)。温度和光照双因素对花色素影响:加热后的色素溶液在室内自然光、室外阳光处比在避光处的降解速度明显加快;在不同光照下的结果显示,加热温度≤60℃时,各温度间对花色素稳定性影响差别不大,而温度≥70℃时,各不同温度间对花色素影响差异显著(图4-C~D)。说明花色素具有一定的耐热性,受光照影响明显,应该避光
2.3葡萄果皮花色素理化性质分析
2.3.1葡萄果皮色素光谱特性图3可以看出葡萄
果皮花色素在甲醇、乙醇溶液中最大吸收波长在
530nm处,而在水溶液中则发生了位移,在510nm
处。根据花色素光谱特性(可见光区的最大吸收波长在500~540nm),说明红地球葡萄果皮花色素属花色素类。
2.3.2溶液的pH值对花色素稳定性影响由表1
看出,各处理间差异显著。pH2时,吸光值最大(0.713),颜色为紫红色;pH3时,溶液颜色变化不明显,但色素吸光度值明显降低;pH4时,溶液颜色明显变浅;pH5~6时,溶液颜色更浅,吸光度值降为原
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