切花月季卡罗拉组培与快繁研究——基本外植体和初代培养基筛选

月季组织培养

目录摘要 (4)前言 (4)综述 (5)1．外植体 (5)1.1取材部位1.2取材时间1.3取材大小2. 消毒 (8)3. 接种方式 (8)4.培养基 (9)4.1基本培养基4.2激素4.2.1不同激素对诱导愈伤组织的影响4.2.2不同激素对继代培养的影响4.2.3不同激素对生根培养的影响4.3糖浓度的影响4.4无机盐4.5琼脂5.培养基的配置 (13)6.培养条件 (14)7．防褐化 (14)技术路线与实验设计 (15)参考文献 (17)摘要：为了进行月季组织培养实验，我们查阅了相关文献，从多个方面了解影响月季组织培养的因素，如外植体的取材部位、时间、大小、消毒、接种方式、不同阶段激素的配比、培养基成分、培养条件等，以期在实验中调控月季组培的环境，确保实验顺利进行。

基于我们想探究激素对组织培养中细胞的脱分化和再分化的作用这一想法，我们的设计了以ＮＡＡ浓度、６ＢＡ浓度、外植体部位为影响因素的正交实验（L9（3４）），并考察NAA与6BA的交互作用。

同时，我们还以接种方式作为单因素考察其对愈伤组织诱导的影响。

关键词：组织培养、影响因素、正交前言在阅读了植物组织培养的相关文献资料后，我们设计了此次组织培养实验方案，考察细胞分裂素浓度、生长素浓度、接种方式、取材部位因素对愈伤组织的形成有何影响，期望寻找出诱导月季愈伤组织的最佳条件；同时探究由愈伤组织诱导出芽及生根所需的最佳浓度配比。

并在月季组织培养过程中，掌握外植体消毒方面要注意的事项，整个培养过程中培养条件的选取与控制，实验过程中出现的现象的观察记录以及分析，在这个过程中不断加强理论与实践的联系，深化对理论知识的理解。

对于外植体选择，我们采用了以往研究者的做法，即选用带腋芽的枝条。

但是，我们的不同之处在于，我们还保留了一部分刚好能包裹住腋芽的叶柄。

这样做的目的是为了在消毒时避免芽受到太大损伤。

参考论文中防褐化多用抗氧化剂和其他抑制剂，减轻外植体在组培中的酶促褐变，我们根据生理生化原理，考虑到酶活性与温度有关、以及外植体内的酚类物质含量有关，因此需对外植体做如下处理：接种前先将外植体用低温水流冲洗24小时；选择晴朗天气采摘外植体。

切花月季新品‘甜美女孩’快速繁殖关键技术研究

转 接 接 种 于 以 下 增 殖 培 养 基 中 进 行 增 殖 培 养 ：１ （）
ＭＳ 一ＢＡ ． ／ ＋６ ３ ０ ｍｇ Ｌ＋ＮＡＡ ． ／ ０ ２ｍｇ Ｌ＋２４ ．一Ｄ ． ／Ｌ １０ ｍｇ ＋
第 一 作 者 简 介 ：种高军 （９８ ） １７ 一 ，男，林业工程师；主要从事花
生长缓慢健康 生长缓慢健康 生 长缓慢健康
ＮＡＡ ． ｍｇ Ｌ ２ ４ １０ ｍｇ Ｌ ０ ２ ／ ＋ ，－Ｄ ． ／ ＋蔗 糖 ３ ／ ０ ｇ Ｌ；（） ４
ＭＳ ６ Ｂ ０ ５ ｍｇ Ｌ ２ ４ Ｄ ． ／ ＋蔗 糖 ３ ／ 十 一 Ａ ． ／ ＋ ，－ １０ ｍｇ Ｌ ０ ｇ Ｌ；
ｓａｃ ｅ ． ｈ ｅｕｔ ｓｏ ａ ｔｅｍ ｄｌ ａｔ ｏ ｏ ｌｄｎ ａ ｅｈｇ ｅｔｉ ｕｔ ｎｅ ｉｉ ｃ ａｌｓ（ ａｈｎ ０ ％）， ｎ ｅｒｈ ｄ Ｔ ｅｒｓｌ ｈｗ ｔ ｔ ｈ ｉｄｅｐ ｒ ｆ ｔ ｅ ｏ ｓ ｓｔ ｉｈｓ ｎ ｃｉ ｆｃ ｎｙｏ ｃｌ ｓ ｈ ｓ ｃｙ ｈ ｈ ｄ ｏ ｆ ｅ ｆ ｕ ｒ ｃ ｉｇ１０ ｅ ａｄ
（） ＋ 一 Ａ １０ｍｇ Ｌ ＮＡＡ ００ ／ ＋ ５ＭＳ ６ Ｂ ． ／ ＋ ．５ｍｇ Ｌ 蔗糖３ ／ 。 ０ｇ Ｌ
培养室培养２ 后统计苗高 、分化倍数 、生长状 况等指标 。 ５ｄ
１２３ 生根培养基的筛选 ．．
剪取健壮的苗高约 １５ ． ｃ ．～２０ ｍ
女孩 ’最 佳分化 增殖 培养 基 ，培养 出的 芽 苗生长 速 度快 ，
卉繁育及生物技术方面研究。
蔗糖 ３ ／ ０ ｇ Ｌ，（ＭＳ ６ Ａ ２０ｍｇ Ｌ ＮＡＡ ． ｒｇ Ｌ ２ ＋ 一Ｂ ． ／ ＋ ） ０ ２ａ ／ ＋
２ － ． ／ ＋蔗糖 ３ ／ ， Ｄ １０ｍｇ Ｌ ４ ０ｇ Ｌ；（） ＋ 一 ． ｍｇ Ｌ ３ ＭＳ ６ ＢＡ １０ ／＋

月季组培快繁技术研究

2020年第2期现代园艺2.4提升工作人员的养护技术花卉养护工作者需要非常了解花卉的不同特点及其需要的温度、光照、湿度等，这样在养护工作中才能结合理论与实践，同时加大对养护人员专业培养，一定要非常熟悉花卉特点以及习性，这样在后期养护工作中才能更好地养护花卉，只有养护技能提高了才能保证整体花卉质量的提高。

2.5水培植物的养护技术水培植物是在水中生长的植物，比如荷花，由于荷花的根茎在水里，所以一定要保证水里的充足氧气，杂草会降低水中氧气，影响荷花的生长，相关养护工作人员需要定期打捞杂草，还要在水里投放肥料，保证荷花的正常生长。

3结语园林养护中，花卉的养护工作是高要求，相对复杂的工作，花卉种类不同养护技术也不一样，因此花卉的养护工作非常重要，为了改善我们的空气质量，美化居住环境，需要我们共同努力，让我们的生活环境更加美好。

参考文献[1]黄文福.园林工程植物科学化养护管理技术分析[J].现代园艺，2016（13）[2]冯艳.园林绿化植物种植与养护技术结合措施[J].绿色环保建材，2016（12）（责任编辑禾初）月季，学名，原产于中国，它是一种常绿、半常绿低矮灌木，四季开花，花色主要有红色和粉色，白色和黄色较少，既可作为观赏植物，也可作为药用植物。

主要种类有切花月季、食用玫瑰、藤本月季、地被月季等，花型较大，花开妍丽大气，具有浓郁香气，可广泛应用于园艺栽培和切花，其观赏性极强[1]。

此外，月季花还具有较好的抗真菌及协同抗耐药真菌活性。

其生长适应性较强，耐寒耐旱，对土壤没有过高的要求，但以富含有机质和排水良好的微带酸性的沙壤土为最佳。

喜阳光，但过于强烈的阳光照射不利于花蕾的发育，容易导致花瓣焦枯，因此，喜阳光但要避免长时间的强光直射。

喜温暖，一般最佳生长温度在22～25℃之间，过高的温度会影响开花，因此，在夏季高温时节，月季开花状态不佳，花开品质降低。

在培植过程中，空气相对湿度最好维持在80%，要保持空气流通无污染，若通气不良容易形成白粉病。

月季或雏菊的组培快繁实验报告

月季或雏菊的组培快繁实验报告月季组培月季植物组织培养实验报告姓名：张恒玉（天津师范大学 10生乙）摘要：月季（Floribunda roses）为蔷薇科蔷薇属木本植物, 其花姿优美，花型丰富，花色齐备, 树型易修剪，栽培难度小;其花型大，美丽，幽雅，高贵。

在鲜花应用中，月季花的地位和比重与日俱增,是世界上著名的四大切花之一。

植物组织培养主要以绿色植物细胞或组织块为研究主要对象，把植物体上的生活器官、组织块活细胞从整体上离体下来进行人工培养。

以细胞全能性为理论基础对最适月季培养的培养基、激素、培养基质进行筛选，使离体组织经过脱分化和再分化而发育成新的植物个体。

为月季的快繁和新品种的选育提供了新的途径，在月季的改良上显示了很大的应用潜力。

关键词：月季组织培养Rose Plant Tissue Culture Lab ReportName: ZhangHengyu（Tianjin Normal University college of Life Science, Biological Sciences ）Abstract: Rose (Floribunda roses) for the woody Rosaceae Rosa, the beautiful flower position, abundant flowers, colors ailable, easy to trim the tree, planting all difficulty; its flowers large, beautiful, elegant, noble. Applications in the flowers, the status and the proportion rose growing is the world's leading one of the four cut flowers. Plant Tissue Culture main object of the green plant cells or tissue blocks for research, Of life on the plant organ, tissue block living cells isolated from the whole down the artificial culture, Cell totipotency theory based on the optimum rose culture medium, hormones, culture media filter, Isolated tissue and develop into new individual plants after dedifferentiation and redifferentiation. breeding of new varieties offer a new way, in the rose show a significant improvement potential applications.Keywords: Rose tissue culture1 月季介绍第1页下一页。

大白杜鹃组培与快繁研究——基本外植体和初代培养基筛选

２ Ｇ ｉ ｏ ｃｄｍｙｏ ｃ ｎｅ ， ｕ ａ ｇ ５ ０ １ Ｃ ｉ ） ． ｕｚ ｕＡ ａｅ ｆ ｉ ｃｓＧ ｉ ｎ ０ ０ ，ｈｎ ｈ Ｓｅ ｙ ５ ａ
Ａｂｓｒ ｃ ： ’ｉ ｒｉｌ ｉ ｌ ｔ ｄ ｅ ｎ ｐ ｍａ ｙ ｃ ｌｕ ｅ ｏ ｏ ｏ ｅ ｄｒ ｎ ｄ ｃ ｒ ｍ ｔ ｈ ｏ ｉ ， ｔｍｓ，ｅ ｄ ｔ ａ ｔ １ｈ ｓａ ｔ ｅｍａｎ ｙ ｓｕ ｉ ｄ ｏ ｒ ｒ ｕ ｔ ｒ ｆ ｃ ｉ Ｒｈ ｄ ｄ ｎ ｏ ｅｏ ｕ ｗｉｈ ｓ ｏ ｔｔ ｐｓ ｓｅ ｓｅ ｓ ａ ｅ ｔ ｔ ｒａｓ Ｔｈ ｅ ｕ ｔ ｈ ｗｅ ｈ ｔ ｓｔ ｓｉ ｍａｅ ｌ ． ｅ ｒ ｓ ｌｓｓ ｏ ｄ ｔ ａ ：Ａｓｅ ｐ ａ ｔ ，ｈｅ ｓｅ ｓ ｇ ｎｔｗａ ｅｔ ｒｔ ａ ｈ ｏ ｉ １ ４ ＭＳ ｎｇ ｉ ｘ ｌ ｎ ｓ ｔ ｔｍ ｅ ｍｅ ｓｂ ｔ ｈ ｎ ｓ ｏ ｔｔｐ， ／ ｅ ｗａ ｕ ｔｂ ｅｆ ｒｃ ｌ ｒｎｇ ｅ ｐ ａ ｔ． ／ ｓｓ ｉａ ｌ ｏ ｕ ｔｉ ｘ ｌ ｎｓ １ ４ ＭＳ＋ＺＴ ． ／ ＋ＮＡＡ ０ ／Ｌ ｓｔ ｅｂａ ｉ ｕ ｔｒ ｄ ｕ ｆｒ ｕ ０ ５ｍｇ Ｌ ０． １ｍｇ ｗａ ｓｃｃ ｌ ｅｍｅ ｉ ｍ ｏ ｈ ｕ
ｉ ｄ ｃｉ ｎ ｓ ｏ ｔ ． ｈ ｏ ｓｉ ｄ ｃ ｉｎ ｒｔ ａ ２ ｎ ｕ ｔ ｈ ｏ ｓ ｓ ｏ ｔ ｎ ｕ ｔ ａｅ ｗ ｓ９ ％ ｏ ｒ ． ｈ ｕ ｔ ｂｅ ｍｅ ｉ ｍ ｏ ｅ ｄ ｇ ｒ ｎ ｔ ｎ ｗａ ／ ｏ ｏ ｒｍｏ ｅ Ｔ ｅ ｓ ｉ ｌ ｄ ｕ ｆｒ ｓ ｅ ｅｍｉ ａｉ ｓ １ ４ ａ ｏ
西藏、 湖北、 湖南省等地¨ 。大 白杜鹃是杜鹃花 中少 Ｊ
有 的香 花种类 ， 花大 、 花冠 漏 斗 状钟 形 、 白色 或带 蔷 薇

2021大马士革玫瑰的快速繁殖技术探讨范文1

2021大马士革玫瑰的快速繁殖技术探讨范文 大马士革玫瑰（Rosa damascene Mill.var.kazanlika）为蔷薇科蔷薇属灌木，花香纯正，是萃取玫瑰精油和加工玫瑰纯露的优良品种。

玫瑰精油含有多种化学成分（如香茅醇、香叶醇等芳香物质、有机酸等有益美容的物质）[1],被认为是玫瑰精油的极品。

大马士革玫瑰目前主要以分根、扦插、压条及组培繁殖[2].用压条、嫁接等方法繁殖，受季节、母株材料等多种因素限制，成活率极低，很难进行规模化生产；采用离体培养繁殖，在较短时间内可获得大量、整齐一致的种苗。

黄颖等[3]以大马士革玫瑰茎尖为外植体进行组培快繁技术研究，筛选出最佳的初代培养基、继代培养基和生根培养基。

吴新海等[4]研究了不同激素配比对大马士革玫瑰茎段继代增殖和生根培养的影响 , 继代增殖培养以 MS +6 -BA1.0mg/L +NAA0.1mg/L+GA30.1mg/L+蔗糖 3%+琼脂 0.6%为宜；生根培养以 1/2MS+IBA0.5mg/L+蔗糖 3%+琼脂 0.6%为宜。

赵蓓蓓等[5] 对大马士革玫瑰组培快繁体系进行了初步研究，指出继代增殖培养以1/2MS+6 -BA1.0mg/L +NAA0.04mg/L +IBA0.1mg/L较好，增殖系数为 2.4,最佳增殖培养基和生根培养基仍需继续探索。

本研究在前人研究成果基础上，初代培养以 MS 培养基为基本培养基，增殖和生根培养以 WPM 培养基为基本培养基，以大马士革玫瑰带腋芽的茎段为外植体，探讨不同浓度组合的植物生长调节剂对不定芽诱导、增殖和生根的影响，以期为大马士革玫瑰的快速繁殖及商业化生产奠定基础。

1 材料与方法 1.1 试验材料 大马士革玫瑰采自石家庄圣地玫瑰公司，以生长健壮、无病虫害的当年生半木质化的嫩枝为试验材料。

1.2培养条件 初代培养以 MS 培养基为基本培养基；继代增殖和生根培养以 WPM 培养基为基本培养基，添加不同浓度组合的植物生长调节剂，培养基中均加入0.60%的琼脂、蔗糖 30.0g/L,pH5.6~5.8.培养温度22~28℃，空气相对湿度 40%~60%,光照强度为 1500~2000Lux,光照时间为 14h/d. 1.3试验方法 1.3.1 外植体处理 （1）消毒时间对外植体影响试验。

蓝丰蓝莓快繁过程中初代培养基的筛选研究

丛蓝浆果 ， 目前北高丛蓝浆 果 （ 高灌 蓝莓 ） 品种 中栽 培 面积最大的是蓝 丰 （ ｌｅｒ ） Ｂｕｅｏ ，占高灌蓝莓 总面积 的 ｐ ３ ％ｔ 我 国蓝浆果 的引种工作始 于 ２ 世纪 ８ ５ ｚ 。 Ｏ Ｏ年代 中
后期 ， 引种成功和得到 了推广 生产１１ 目前 ， 并 ６。 ， ７ 全世界 有２ Ｏ多个 国家和地 区开始 蓝莓产 业化栽培 且市场 容
现代 园艺
２ １ 年第 ５ ０２ 期
蓝丰 蓝莓快 繁过程 中初代培 养基 的筛选 研 究
廖 容 冯巧丽 何 珊
６５ １） ２ ０ ４ （ 四川农业大学林 学院 ， 四川雅 安
摘 要： 蓝莓果具有很 高的保 健功能 ， 被国际粮农组 织列为人类五大健康食品之 一， 目 是 前世界上最重要 的小果类果树之 一。 实 本 验 以蓝丰（ １ ｃ ｐ蓝莓果 品为试材 ， Ｂｕ ｒ ） ｅｏ 以蓝丰蓝莓带 芽茎 为外植 体， 段 在添加 不同生长调节剂的 ＭＳ Ｉ２ 培养基上培养 ， 和 ／ＭＳ 筛选
２ 结果与分析
２ 不 同处理对外植体启动率的影响 ． １
半木质化枝条为材料 ，枝 条切成 １２ ｍ的带芽茎段 ， ｃ 经１ ％的洗 衣粉和 １ ％消洗灵 水 中漂洗后 ， 用毛笔刷清 洗 外植 体表 面 ， 再用 流水 冲洗 ３ｒｎ 在无 菌条件 下 ， ０ ｉ， ａ 用 ７ ％酒精消毒 ３ ｓ ５ ０ ，再用 ０１ ． ％升汞 （ ｇ ｌ Ｈ Ｃ２ ）处理 ６ ａｎ无菌水冲洗 ３４次 ， ｒｉ， － 以备接种１ ９ １ 。 外植 体接种选用 的基本 培养基有 ＭＳ １ ＭＳ 和 ／ 两 ２
种， 附加不 同浓度 ６ Ｂ （ｍ ／ 、ｍｅ 、 ｇ ） Ｎ Ａ － Ａ １ ｇ ２ Ｃ ３ｍ ／ 和 Ａ Ｌ Ｌ Ｌ （ ． ｇ 、． ｍ ／ ）在培养基中添加蔗糖 ３ Ｌ 琼脂 Ｏ２ ／ ０ ｇ ， ｍ Ｌ ５ Ｌ ０ ／， ｇ

月季的组织培养

诱导培养基以MS为基本培养基（硝酸 盐、钾和铵的含量高），附加适量的 细胞分裂素6-卞氨基嘌呤（6-BA）0.53.0mg/L和生长素萘乙酸（NAA） 0.01-1.0mg/L,且培养基中添加蔗糖有 增加丛生芽数量的作用。
壮苗培养与生根
1、壮苗培养 在继代培养过程中，细胞分裂素浓度的增加有助于增殖系 数的提高。但伴随着增殖系数的提高，增殖的芽往往出现 生长势减弱，不定芽短小、细弱，无法进行生根培养的现 象；即使能够生根，移栽成活率也不高，必须经过壮苗培 养。壮苗培养时，可将生长较好的芽分成单株培养，而将 一些尚未成型的芽分成几个芽丛培养。 通过选择适宜的细胞分裂素和生长素的种类及不同浓度配 比，可以同时满足增殖和壮苗的不同要求。高浓度的生长 素和低浓度的细胞分裂素的组合有利于形成壮苗。因此， 在以丛生芽方式进行增殖时，适当降低培养基中BA等细胞 分裂素的浓度，并增加NAA等生长素的浓度，就能达到壮 苗培养的目的。在实际生产中，我们一般用较低浓度的细 胞分裂素与生长素组成合理的比列，将有效增殖系数控制 在3.0-5.0，以实现增殖和壮苗的双重目的。
注意问题：
谢谢观看!
2、生根培养 将成丛的试管苗分离成单苗，转接到生根培养基上，在培养容器内诱 导生根的方法。试管苗生根的优劣主要体现在根系质量（粗度、长度） 和根系数量（条数）吸收方面。不仅要求不定根比较粗壮，更重要的 是要有较多的毛细根，以扩大根系的吸收面积，增强根系的吸收能力， 提高移栽成活率。根系的长度不宜太长，在粗而少与细而多之间，可 能以后者较好。 在生根阶段对培养基成分和培养条件可进行调整，减少试管苗对异养条 件的依赖，逐步增强光合作用的能力。对于大多数物种来说，诱导生 根需要有适当的生长素，其中最常用的是NAA和IBA，浓度一般为 0.1-10.0mg/L。但唐菖蒲、水仙和草莓等组培苗很容易在无生长素的 培养基上生根。 一般情况下矿质元素浓度较高时有利于茎、叶生长，较低时有利于生根。 生根培养基中无机盐和蔗糖浓度减少一半，光照强度由原来的5001000lx提高到1000-5000lx，能刺激小植株自身进行光合作用制造有 机物，以便由异养型向自养型过渡。在这种条件下，植物能较好的生 根，对水分胁迫和疾病的抗性也会有所增强，植株可能表现出生长迟 缓和较轻微的失绿，但生产实践证明，这样的幼苗，要比在低光强条 件下的较绿较高的幼苗移栽成活率高。 生根阶段采用自然光照比灯光照明所形成的试管苗更能适应外界环境条 件。培养基中添加活性炭有利于提高生根苗质量。在樱花生根培养基 中加入0.1%-0.2%活性炭后，试管苗不仅生长健壮，无愈伤组织，而 且根系较长、白色、有韧性，移栽后新根发生快，质量好，成活率高。

月季“卡罗拉”组培快繁研究

要 意义 ｌ ｌ 。本试 验以月季“ 卡罗拉” 为材料进行组织培
养技术研究 ， 以期建 立该 品种快繁体系 ， 同时为完善月 季组培快繁技术
１ 材 料 ． １
以上所 有培养 基均添加 ３ｇ￣蔗糖 ，ｇＬ ｏ／ ６， 琼脂 ，Ｈ ｐ 值调 至 ５ 左 右 。 有瓶苗在培养室 中培养 ， ． ８ 所 培养条件
不易成活 。朱鹿 鸣 ４ 认为具根 原基的试管苗 比根系 已长 出的试管苗移栽成活率高 ，并且耐贮藏 ，不易烂 苗， 相关机理有待进一步研究 。 本研 究初步建立 月季 “ 罗拉” 培快繁体 系 ， 卡 组 为
大规模推广应用该 品种提供 了基础 。江西省近年来大 量 引进名优月季 品种 ， 但一直未建立相应 的快繁体 系 ，
目套用 。
到添加不 同浓 度 的 Ｎ Ａ或 ＩＡ的 １ ＭＳ培养基 中进 Ａ Ｂ ／ ２
行生根 培养 。结果 发现 ， １ Ｍ ＋ Ａ ０１ ０ ｍ ｍ） 在 ／ Ｓ Ｎ Ａ（． ． ｇ ２ —６
的培养 基 中培养 的植 株基部 均产生许 多愈 伤组织 ， 培 养 １ｄ后才有部分植株在愈伤组织周 围长 出根 ，根短 ７
在试验 的 Ｂ Ａ浓度 范 围内，嫩芽 的增殖倍 数开始 随着 Ｂ Ａ浓度 的增加而增加 ， Ｂ 当 Ａ达 １ ｍ ／ ． ｇ ５ Ｌ后增殖
倍数无 明显变化 。 在相同浓度的 Ｂ Ａ条件下 ， Ａ Ｎ Ａ浓度 对增殖倍数影 响不大 ， 响增殖苗长 势。 但影 从增殖倍数 和 增 殖 苗 长 势等 综 合 因素 看 ， ＋ Ａ ２ ｍ ／＋ Ａ ＭＳ Ｂ ． ｇ Ｎ Ａ ０ Ｌ
２３ 生根 培 养 ．
２ ． 同激 素浓度对生根 的影响 。 ． １不 ３ 将月季 幼嫩植 株接
体上看 ，本研究结 果与其 它月季组织培养研究 在某些 结果方面具有一定 的差异 ，这可能与其基因型差异有 关 】 。在进行 其它 品种月季组 培快 繁时 ， 进行 培养基 及各种激素 的适宜浓度配 比的探讨是必要 的，不能盲

绿萝组培快繁技术研究

绿萝组培快繁技术研究一、绿萝组培快繁技术的原理绿萝组培快繁技术是利用植物体细胞的分裂和再生能力，在无菌条件下培养出植物组织和器官的繁殖方法。

通过在不含植物生长调节剂的培养基上培养植物组织，可以促进绿萝植株的快速生长和繁殖，达到大规模快速繁殖的目的。

组培快繁技术的原理主要包括以下几个方面：1. 选择优良组织通过从健康的母株中选择茎尖、叶片等细胞分裂能力较强的组织，作为组培快繁的外植体。

外植体的选择对于后续的培养和再生能力具有重要的影响。

2. 建立无菌培养体系将外植体进行表面消毒处理，然后在无菌条件下进行培养。

通过消毒剂的处理和无菌技术的应用，可以防止外源微生物的感染，保证培养基和外植体的无菌状态，为后续的培养提供良好的环境。

3. 植物激素的应用在培养基中添加适当浓度的植物生长调节剂，如激素和生长素等，可以促进外植体的分裂和再生，使其快速生长和繁殖。

植物激素的类型和浓度是影响组培快繁效果的关键因素之一。

4. 生长条件的控制在培养箱中控制温度、湿度和光照等环境因素，促进外植体的生长和再生。

合理控制生长条件可以提高组培快繁的效率和成功率。

绿萝组培快繁技术的方法主要包括以下几个步骤：2. 筛选培养基选择适当的培养基配方，包括基本培养基和添加植物激素的培养基，满足外植体生长和再生的需要。

培养基的配方和pH值的调控对于组培快繁的效果具有重要的影响。

3. 面向培养将处理好的外植体移入含有适当浓度植物激素的培养基中进行培养，控制生长条件，促进外植体的分裂和再生。

4. 增殖和移栽当外植体的再生达到一定程度时，可以将再生苗移入含有生长调节剂较低的培养基中进行增殖。

当增殖苗的数量和质量达到一定要求时，可以进行移栽，转入土壤中进行生长。

5. 生长管理对于移栽后的绿萝植株，可采取适当的生长管理措施，包括施肥、浇水、修剪等，促进植株的生长和繁殖。

1. 快速大规模繁殖通过组培快繁技术，可以在较短的时间内大规模繁殖绿萝植株，满足市场需求，提高绿萝的生产效率。

植物组织培养的各个阶段和完整流程

导读：本文很通俗的介绍了组培快繁技术在实际应用中的5个阶段：准备阶段——初代培养——继代增殖——生根诱导——炼苗移栽，不同品种流程略有差异，不过基本框架大体一样的。

一个完整的植物组织培养过程一般包括以下几个步骤：1. 准备阶段查阅相关文献，根据已成功培养的相近植物资料，结合实际制订出切实可行的培养方案。

准备阶段又分为两步：1. 1 培养基的配置与灭菌根据实验方案配制适当的化学消毒剂以及不同培养阶段所需的培养基，并经高压灭菌或过滤除菌后备用。

1. 2 外植体选择与消毒选择合适的部位作为外植体，采回后经过适当的预处理，然后进行消毒处理。

将消毒后的外植体在无菌条件下切割成一定大小的小块，或剥离出茎尖，挑出花药。

2. 初代培养将外植体接种到诱导培养基后置于培养室或光照培养箱中培养，促使外植体中已分化的细胞脱分化形成愈伤组织，或顶芽、腋芽直接萌发形成芽。

这一阶段主要为获得无菌苗、嫩茎、丛芽或愈伤组织，从而建立起无菌培养体系。

3. 继代增殖培养将初代培养获得的芽、丛芽、嫩茎或胚状体等培养物经切分，反复转移到新的增殖培养基上，进行扩大增殖培养，当芽苗繁殖到一定数量后，再将一部分接种到分化培养基，培养无根芽苗，另一部分保存或继续扩繁。

进行脱毒苗培养的需提前进行病毒检测。

4. 生根诱导刚分化形成的芽苗往往比较弱小，多数无根，此时可以接种到生根培养基上，生根培养基的特点是降低细胞分裂素浓度或不加，提高生长素浓度，促进小苗生根，提高其健壮度。

5. 炼苗移栽选择生长健壮的生根苗进行室外炼苗，待苗适应外部环境后，再移栽到疏松透气的基质中，注意保温、保湿、遮荫，防止病虫危害。

当组培苗完全成活并生长一定大小后，即可移向大田用于生产。

例如：茎尖→表面消毒→接种诱导培养基→茎尖生长→病毒检测鉴定→培养无根小植株→培养生根→完整小植株→炼苗20-25天→移栽成活。

常规情况下详细的生产流程图如下：对不同的品种词流程会略有差异，如进行果树育苗还需进行嫁接等操作流程，但对组培工厂化育苗而言，一般可根据上面的流程图来安排各项作业，只有相互衔接好、配合好，才能提高生产效益。

月季组织培养(1)

月季组织培养分组：12级生技2班3组指导老师：韩文军成员：成晨，江应龙，牟思斯，盛威摘要了解月季组织培养的研究概况，以及组织培养中遇到的相关问题的研究。

外植体的选择为月季枝条，灭菌用75%酒精和10%次氯酸钠，初代培养基为MS+BA 1mg/L，继代培养基为MS+BA1.5mg/L 十N A A 0.05m g/ L。

引言月季是中国十大名花之一，被誉为“花中皇后”，具有极高的观赏价值和商业价值①它是蔷薇科蔷薇属多年生落叶或常绿灌木②，被广泛运用于园林绿化，具有很高的观赏价值和经济价值。

目前月季的繁殖手段除了传统的扦插、嫁接、压条之外，还有月季的组织培养技术，相对前面几种方法来说，月季的组织培养技术能大幅地提高获得月季植株的速度和质量，正越来越被广泛地运用到实际生产中。

一方面，组织培养可有效地保持母株的优良性状；另一方面，它对植物品种改良和选育新品种也有重要意义③。

0实验流程外植体处理→初代培养→继代培养→生根培养→壮苗炼苗→移栽1外植体的选择和灭菌1.1外植体的选择月季组培外植体通常采用带芽茎段。

同一枝条上不同部位的腋芽诱导效果不同。

取枝条中部的腋芽效果最好，这可能与月季枝条不同部位的腋芽成熟程度及休眠状态不同等因素有关。

很多研究都证明枝条中部的腋芽萌发较顶部和基部时间早，且中部的腋芽长势好，增殖系数高，其次是基部，再次是顶部④-⑥。

另外，取材时也注意天气的选择，根据几次初代培养的结果来看，天气晴好时取材初代培养的成功率要比阴雨天要高，具体原因可能是阴雨天植物的外植体带菌比较多，杀菌不彻底从而使培养失败。

此外，外植体的休眠状态对芽的萌发也有影响，李青等⑦采用1 年生枝条的冬芽和当年生枝条的腋芽为外植体进行比较，发现越冬芽较嫩枝条的芽成活率高，且萌动所需时间较短，主要原因是芽内积累了丰富的营养物质，在适宜的条件下很快萌发生长；而春季嫩枝上的芽，由于刚刚形成且未经休眠，所以本身较弱，但越冬芽污染率高于嫩枝芽。

月季如何组织培养

月季如何组织培养月季属蔷薇科蔷薇属多年生草本植物，每年多次开花，而且香味怡人，在观赏植物中地位很高，分布极广，适应性强，栽培容易，使得月季无愧于“花中皇后”之美誉，随着组织培养技术的应用，成功培育了大量优质月季组培苗，那月季如何组织培养呢?以下是小编为你整理的月季组织培养技术，希望能帮到你。

无菌培养的建立(1)选条从中国一级科研机构引进6个月季优良品种，分别是“红双喜”、“白雪山”、“彩云”、“和平”、“皇冠”、“金丝鸟”。

选取生长健壮的当年生枝条，用饱满而未萌发的侧芽作为外植体。

以枝条中段芽最好，因为接种后，中段芽第5天左右就能萌发，而基部和梢部的芽往往迟至15天才萌发。

(2)培养基的配制整个培养过程都可用MS培养基，诱导芽萌发所加的植物激素只需要BA一种即可，每升用0.3～1.Omg，6个品种均适用，只是萌发迟早有些差别。

(3)清洗外植体采回的枝条切去叶，再剥去附在茎上的叶柄及皮刺，先整段用洗手刷沾浓洗衣粉水仔细刷洗，再用自来水冲洗，毛巾擦干，放置在小木板上，用利刀切成2～3厘米一段，每段至少一个侧芽，装入消毒过的培养皿，放在超净工作台上，打开紫外灯，做表面灭菌30分钟。

(4)消毒与接种在超净工作台上，用饱和漂白粉上清液作表面灭菌25～30分钟，灭菌时间快到时，即倾去灭菌溶液，用无菌水涮洗数次，无菌纱布吸干茎段外表水分，按无菌操作要求，接种到小试管里，从芽萌发到芽长到1厘米左右需要2～3周。

(5)培养培养温度21℃最好，最高不超过25℃，有昼夜温差，光照10～12小时/天，光强800～1200LX。

继代增殖(1)将上述无菌芽从原茎段上切下，转接到MS+BA1-2+1AA0.1-0.3或MS+BA1-2+NAA0.01-0.1的培养基上，促使嫩茎长出更多的侧芽，原茎段弃去。

继代增殖培养基每升用蔗糖30克。

(2)5周后，“红双喜”增殖了3.5倍，“白雪山”4.1倍，“和平”、“彩云”5～6倍，“皇冠”、“金丝鸟”达15倍。

月季植物组培方案

月季植物组培方案月季是一种常见的观赏花卉，其花朵色彩丰富，花期长，是花坛、花境、花笼和花圃中常见的植物。

然而，传统的繁育方法存在效率低下、时间长、容易受到病害感染等问题。

因此，利用组织培养技术进行月季植物的繁育具有十分重要的意义。

一、材料准备1.可供选择的月季植株，选择健康无病害的茎干作为外植体。

2.组培基质：可以选择MS培养基，配制麦芽糖浓度为30g/L，琼脂浓度为7g/L。

3.消毒液：例如75%酒精、10%双氧水、0.1%漂白粉。

4.无菌器皿：例如培养瓶、试管、平皿等。

5.显微镜及显微镜片：用于观察、检验组培过程中的细胞分裂情况。

6.整枝针和剪刀：用于取样。

二、外植体消毒处理1.将外植体的茎干从月季植株上剪下。

2.将茎干进行无菌处理，先用70%酒精擦拭，再浸泡于10%双氧水中10-15分钟，最后用无菌水洗净。

3. 将处理后的茎干切成0.5-1.0cm长的段，并观察切割的部位是否出现霉变，如有则再次进行消毒处理。

三、组培基质配制1.取适量MS培养基粉末，按照说明书配制，加入适量麦芽糖并充分溶解。

2.将溶解的培养基过滤灭菌，滤液加热至煮沸并充分搅拌，再加入适量琼脂并搅拌均匀。

3.将配制好的培养基灌装到无菌器皿中，如培养瓶、试管或平皿。

四、组培过程1.将处理好的茎段放置于准备好的无菌器皿中，使其埋入培养基中。

2.将无菌器皿密封，并放入无菌环境，通常应保持在25-28℃、光周期为16/8小时（光照/黑暗）的条件下，以促进茎段的快速生长。

3.在培养过程中，应定期观察外植体的生长情况，如出现异常或病害感染，应及时更换培养基或采取其他措施进行处理。

4.经过3-4周后，可观察到茎段的侧芽开始发生增殖，此时外植体可进行移植。

五、移植1.在移植之前，应先准备好新的无菌器皿和培养基。

2.将茎段取出，用消毒液进行消毒处理，然后将其移植到新的培养基中。

3.将培养皿重新密封，并放回无菌环境中继续培养。

4.经过数周后，可将外植体移植到普通培养基中，进行生根和生长。

大白杜鹃组培与快繁研究——基本外植体和初代培养基筛选

大白杜鹃组培与快繁研究——基本外植体和初代培养基筛选刘燕;王济红;陈训;高贵龙【摘要】以大白杜鹃茎尖、茎段、种子为试验材料,对大白杜鹃进行了初代培养研究.结果表明:茎段比茎尖更适合作为芽诱导培养材料;基本培养基以1/4MS为宜,适合芽诱导培养基配方为1/4MS+ZT0.5mg/L+NAA0.01mg/L,芽诱导率在92%以上.种子萌发培养基配方也为1/4MS+ZT0.5mg/L+NAA0.01mg/L,萌发率达100%.【期刊名称】《种子》【年(卷),期】2010(029)008【总页数】4页(P34-37)【关键词】大白杜鹃;组培快繁;初代培养【作者】刘燕;王济红;陈训;高贵龙【作者单位】贵州省生物研究所,贵阳,550009;贵州省生物研究所,贵阳,550009;贵州科学院,贵阳,550001;贵州科学院,贵阳,550001【正文语种】中文【中图分类】S685.21大白杜鹃(Rhododendron decorum Franch．)是杜鹃花科(Ericaceae)杜鹃花属(Rhododendron L．)常绿木本植物，是我国特有种，主要分布在四川、云南、贵州、西藏、湖北、湖南省等地［1］。

大白杜鹃是杜鹃花中少有的香花种类，花大、花冠漏斗状钟形、白色或带蔷薇色、具绿色或粉红色斑点。

花开之时，有阵阵清香扑面而来，沁人心脾，颇具观赏价值。

大白杜鹃还可药用和食用，其根、枝、叶均可入药，具有调和经血、润肺清喉、益气宁神等功效［2］;其花瓣味道鲜美，营养丰富［3，4］，是民间喜爱的风味特色菜肴。

大白杜鹃越来越受到人们的青睐，但人为的乱采滥挖，使其生境遭到严重的破坏，资源日趋受到威胁。

目前，大白杜鹃主要靠种子繁殖，但种子萌发率低，繁育时间长;现虽能扦插育苗，但扦插生根困难，又受季节和资源的限制，所以尚需一种行之有效的快繁方法对其进行繁殖和保护。

组织培养技术是当代兴起的一种快速繁殖的培养途径，不仅简单、迅速、繁殖速度快，更利于植物新品种的推广和规模化生产。

有菌条件下月季组织培养技术

林业科学现代农业科技2012年第8期月季属蔷薇科蔷薇属花卉，品种繁多，近100年来累计的品种数以万计，目前流行的有数千个品种，而且每年许多国家仍在不断选育新品种。

现在许多国家都在用组织培养技术来繁殖月季的优良品种，目前这种快速繁殖方法技术成熟，已进行工厂化生产，对加速老品种的更新换代，迅速普及月季名优新特品种将起到重要的作用。

月季常规组培技术报道很多，但在有菌环境条件下的月季组织培养技术未见报道。

1培养基组成诱导萌芽培养基：MS+BA0.5~1.0mg/L+S106杀菌剂0.3 mL/L；增殖培养基：MS+BA1~2mg/L+NAA0.1~0.2mg/L+S106杀菌剂0.3mL/L；生根培养基：1/2MS+NAA0.1~0.2mg/L+ IAA1.0mg/L（或NAA0.5mg/L）+S106杀菌剂0.3mL/L。

2培养瓶灭菌根据培养瓶的大小、数量，以浸没培养瓶及瓶盖为度，在水池或容器中量取适度的自来水，然后加入S105杀菌剂0.2mL/L，搅拌均匀，放入洗净的培养瓶及盖浸泡2h以上。

然后捞取培养瓶及盖，将其倒扣在干净的工作台面上滤干水，待用。

3灭菌培养基的制作以制取1L培养基为例：量取1L自来水放在电饭煲内加热（因加热蒸发加入母液后到分装时煮沸刚好是定容要求的1100mL，冷却后就是1L，故配1L培养基量取1L自来水），称取白糖30g、琼脂4g，加入电饭煲锅水中，待全部溶解，再加入100倍MS母液（其中：大量元素A10mL、大量元素B10mL、铁盐10mL、微量元素10mL、有机物10mL、1 mg/mL BA0.5~1.0mL），煮沸。

用1mol NaOH或HCl调pH值至5.8，最后加入S106杀菌剂溶液0.3mL，继续煮沸2~3min 使杀菌剂在培养基中混合均匀，再进行分装。

分装前拿起培养瓶使瓶口朝下用力甩净附着在瓶壁和瓶口的水珠，使瓶口朝上放在工作台面上，然后倒入培养基均匀分装，最后拿取培养瓶盖用力甩干瓶盖附着的水珠，扣在倒了培养基的瓶口上，待凝固接种。

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