10分+,新型植物源性长春花外泌体通过TNF
2024-09-06 10:27 点击次数:177 关键词: 植物外泌体;外泌体鉴定;RT-PCR检测
植物源性外泌体样纳米囊泡(PDENs)在疾病治疗和药物传递方面具有优势,但对其生物发生、成分分析和关键标记蛋白的研究仍处于起步阶段,这限制了PDENs的标准化生产。有效制备PDENs仍然是一个重大挑战。
湾湾今天分享的是发表在【Journal of Nanobiotechnology】(IF:10.6)上题为“Novel plant-derived exosome-like nanovesicles from Catharanthus roseus: preparation, characterization, and immunostimulatory effect via TNF-α/NF-κB/PU.1 axis”的研究,该研究报道了一种具有优异稳定性和良好生物相容性的新型PDENs,长春花叶源性外泌体样囊泡(CLDENs)。该研究揭示了CLDENs的生物发生、成分组成、稳定性、生物相容性以及生物分布特征,并通过TNF-α/NF-κB/PU.1轴显示其免疫调节活性。该研究还证明了将植物培养技术应用于大规模生产PDENs的可行性。
研究成果
1、长春花中外泌体样囊泡的分离,CLDENs的物理化学表征
图1A:CLDENs的分离过程示意图。
图1B:CLDENs的TEM分析。
图1C:DLS检测CLDENs的粒径分布。
图1D:纳米流分析仪检测CLDENs的颗粒尺寸。
图1E:CLDENs的zeta表面电荷分析。结果表明,zeta电位值处于-30mV~+30Mv,说明囊泡稳定。
图1F:CLDENs在含表面活性剂环境下的粒径变化。结果表明,表面活性剂能够分解CLDENs。
图1G:CLDENs在含酶环境下的粒径变化。结果表明, CLDENs能抵抗DNase、RNase 和蛋白酶的消化。
图1H:(a-c)CLDENs在pH=6.92、pH=13.58、pH=1.83环境中的粒径变化,(d-f)CLDENs在pH=6.92、pH=13.58、pH=1.83环境中的TEM图像。结果表明,CLDENs在酸性或碱性环境中,仍能保持囊泡样结构,没有明显破裂。
2、CLDENs的生物相容性和生物分布
图2A:CLDENs摄取后随时间推移在细胞内的积累。白色三角形用于标记RAW264.7细胞摄入CLDENs后的形态变化。
图2B:CLDENs对HIEC-6细胞、L-02细胞、RAW264.7细胞的细胞毒性测定。结果表明,细胞存活率在70%以上,CLDENs是相对安全的纳米囊泡。
图2C:使用绵羊血液进行CLDENs的溶血试验。结果表明,CLDENs的溶血率较低超过1%,CLDENs具有良好的生物相容性。
图2D:(a)37℃下在PBS中孵育后,CLDENs的粒径分布变化,(b)37℃下在胃模拟液中孵育后,CLDENs的粒径分布变化,(c)37℃下在小肠模拟液中孵育后,CLDENs的粒径分布变化。 结果表明,37℃放置12小时,CLDENs的粒径不会受到影响。置于小肠模拟液和胃模拟液时,可以保持稳定性至少12小时。CLDENs具有良好的稳定性。
图3A:(a)口服给药后,CLDENs在小鼠体内的生物分布,(b)腹腔注射后,CLDENs在小鼠体内的生物分布,(c)尾静脉注射后,CLDENs在小鼠体内的生物分布。
图3B:腹腔给药后,CLDENs在器官中的生物分布。(a)脑、心、肝、脾、胸腺、肺、肾中的荧光信号,(b)胃肠道荧光信号。
上述结果说明,不同的给药方式会导致CLDENs表现出截然不同的生物分布。数据表明CLDENs可能具有优异的抗胃酸消化率,并且口服后可以在肠道保留很长时间。此外,通过腹腔注射可以实现免疫器官靶向分布。静脉注射到血流中的CLDENs可能会被肝脏和脾脏拦截和快速清除。
3、CLDENs的成分分析
图4A:CLDENs的脂质组学分析。结果表明,CLDENs主要含有EtherPC、PG、PI、EtherPG。
图4B:CLDENs的代谢组学分析。结果表明,CLDENs主要含有氨基酸、脂肪酸和脂质、生物碱和碳水化合物等化合物。
图4C:CLDENs组中鉴定蛋白的分子量分布。
图4D:火山图蛋白质组学分析。
图4E:差异上调和下调表达蛋白的数量。
图4F:差异表达蛋白和上调蛋白的亚细胞定位。
图4G:下调蛋白的亚细胞定位。
上述结果说明,在 CLDENs中显着富集的这些蛋白质中,发现了与多囊泡和腔内囊泡相关的蛋白质,这些蛋白质的富集提供了CLDENs起源于 MVB 的证据。
4、CLDENs通过TNF-α/NK-κ/PU.1轴的免疫刺激作用
图5A:CLDENs促进RAW264.7细胞分泌细胞因子TNF-α和IL-6,而对IL-1β和IL-10的分泌无明显促进作用。
图5B:CLDENs促进RAW264.7细胞释放NO。
图5C:CLDENs增加了RAW264.7细胞iNOS的表达水平。
图A-C的结果表明,CLDENs促进巨噬细胞分泌多种细胞因子并激活炎症反应。
图5D:CLDENs对RAW264.7细胞吞噬FITC-葡聚糖能力的影响的平均荧光强度。结果表明,CLDENs显着增强RAW264.7细胞的吞噬功能。
图5E:CLDENs对RAW264.7细胞吞噬FITC-葡聚糖能力的影响的直方图。
图5F-G:CLDENs增强RAW巨噬细胞表面抗原CD86和MHC II的表达,但对CD206的表达没有明显的影响。F:直方图。G:平均荧光强度。
图5H:CLDENs增加RAW264.7细胞中M1型相关基因的mRNA转录水平。
图5I:CLDENs降低RAW264.7细胞中M2型相关基因的mRNA转录水平。
图5J:CLDENs激活了NK-κB信号通路的传导。
图5K:CLDENs上调RAW264.7细胞中PU.1蛋白的表达水平。
图5L:CLDENs上调RAW264.7细胞PU.1基因mRNA转录量。
图5M:CLDENs对原代脾淋巴细胞活力的影响。
图5N:CLDENs促进原代脾淋巴细胞分泌IL-2。
上述结果表明,CLDENs促进免疫细胞的增殖和分化,并促进其在体外的功能激活。这种免疫调节作用是通过 TNF-α/NF-κB/PU.1介导的。
5、CLDENs减轻环磷酰胺诱导的免疫抑制
图6A:CLDENs对免疫小鼠抑制外周血中白细胞数量的影响。
图6B:CLDENs对免疫小鼠抑制外周血中淋巴细胞数量的影响。
图6C:CLDENs对免疫小鼠抑制外周血中中性粒细胞数量的影响。
图6D:CLDENs对免疫小鼠抑制外周血中单核细胞数量的影响。
图A-D结果表明,中剂量和高剂量CLDENs显着逆转环磷酰胺对血细胞计数的抑制作用。对于低剂量组,CLDENs显着减轻了白细胞、淋巴细胞的下降。
图6E:CLDENs对环磷酰胺免疫抑制模型小鼠血清中细胞因子TNF-α分泌水平的影响。
图6F:CLDENs对环磷酰胺免疫抑制模型小鼠血清中细胞因子IL-2分泌水平的影响。
图6G:CLDENs对免疫抑制小鼠脾淋巴细胞亚群数量的影响。
图6H:CLDENs对免疫抑制小鼠脾淋巴细胞亚群比例的影响。
图E-H:这些结果表明CLDENs通过提高淋巴细胞亚群的比例来促进免疫功能的正向调节。
图6I:CLDENs对免疫小鼠清除碳颗粒能力的影响。
图6J:CLDENs对小鼠骨髓细胞周期分布的影响。
图6K:CLDENs对环磷酰胺诱导的免疫抑制小鼠相对体重增加的影响。
图6L:通过HE染色分析CLDENs对环磷酰胺诱导的免疫免疫抑制小鼠的肝和肾的影响。
图6M:HE染色检测肝和肾的组织学变化。
图I-M:结果表明,CLDENs 给药后能够逆转环磷酰胺引起的病变。
上述结果共同表明, CLDENs减轻了环磷酰胺引起的免疫抑制。
6、植物细胞培养技术应用于CLDENs生产
图7A:CrDDENs的TEM分析。
图7B:纳米流分析仪测量CrDDENs的粒径分布。
图7C:CrDDENs的zeta电位分析。
图7D:CrCDENs的TEM分析。
图7E:纳米流分析仪测量CrCDENs的粒径分布。
图7F:CrCDENs的zeta电位分布。
图A-F结果表明,CrDDENs与CLDENs具有高度相似的物理特性,CrCDENs在粒径和zeta 电位方面与CLDEN不同。
图7G:CrDDENs和CrCDENs对多种细胞系的细胞毒性试验。
图7H:CrDDENs和CrCDENs促进RAW264.7细胞NO释放。
图7I:CrDDENs和CrCDENs促进RAW264.7细胞分泌细胞因子。
图7J:CrDDENs诱导RAW264.7细胞向M1型极化。
图G-J结果表明,对于不同组织来源的PDENs,其生物活性可能并不相同。
上述结果表明,通过植物细胞培养技术生产PDENs的可行性。
结论
该研究从长春花叶(CLDENs)分离出新型的PDENs,在CLDENs中鉴定出高含量的醚磷脂、MVB相关蛋白和六种标记蛋白。这些发现为PDENs的生物形成和活动追踪提供了启发。CLDENs可以被巨噬细胞内化,并能经受恶劣条件的pH环境和各种酶的消化。另外,CLDENs经腹腔注射后具有免疫器官靶向性,并通过建立TNF-α/NF-κB/PU.1减轻环磷酰胺诱导的免疫机制。为了确保CLDENs的稳定性,该研究建立了长春花植物细胞培养体系,以提供具有相似物理特性和生物活性的类CLDENs纳米囊泡。结果表明,CLDENs可能是一种潜在的免疫调节材料,可以大规模应用于工业应用。
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