含芦荟提取物的组合物及其应用.pdf
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1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 202010693083.2 (22)申请日 2020.07.17 (71)申请人 澳门科技大学 地址 中国澳门氹仔伟龙马路澳门科技大学 (72)发明人 张伟姜志宏李妍杨紫薇 郭建茹王彩云 (74)专利代理机构 广州嘉权专利商标事务所有 限公司 44205 代理人 尹凡华 (51)Int.Cl. A61K 36/896(2006.01) A61K 36/886(2006.01) A61P 35/00(2006.01) A61K 31/4745(2006.01) (54)发明名称 。
2、一种含芦荟提取物的组合物及其应用 (57)摘要 本发明属于医药领域, 公开了一种含芦荟提 取物的组合物及其应用, 所述组合物包括芦荟提 取物和喜树碱及其衍生物, 芦荟提取物和喜树碱 及其衍生物联合使用能够增加对癌细胞中DNA损 伤, 上调H2AX蛋白水平, 阻滞细胞周期于S期, 诱导细胞凋亡和抑制WNT/catenin信号通路, 两者协同增效, 增强癌细胞的细胞毒活性, 以达 到抗癌的作用。 可以将其应用在抗癌药物、 WNT/ catenin通路抑制剂、 WNT/catenin通路信 号素失活剂的制备中。 权利要求书1页 说明书9页 附图7页 CN 111773301 A 2020.10.16。
3、 CN 111773301 A 1.一种含芦荟提取物的组合物, 其特征在于, 包括芦荟提取物和喜树碱及其衍生物。 2.根据权利要求1所述的组合物, 其特征在于, 所述组合物包括芦荟提取物和喜树碱衍 生物; 所述喜树碱衍生物为10-羟基喜树碱。 3.根据权利要求1所述的组合物, 其特征在于, 所述芦荟提取物的含量为50-400ug/ml, 所述喜树碱及其衍生物的含量为2.5-50uM。 4.根据权利要求3所述的组合物, 其特征在于, 所述芦荟提取物的含量为50-150ug/ml, 所述喜树碱及其衍生物的含量为5-30uM。 5.根据权利要求1-4中任一项所述的组合物, 其特征在于, 所述芦荟提取。
4、物采用水或/ 和醇浸提得到。 6.一种药物, 其特征在于, 包括权利要求1-5中任一项所述的组合物和辅料。 7.权利要求1-5中任一项所述的组合物在制备抗癌的药物中的应用。 8.权利要求1-5中任一项所述的组合物在制备抗肝癌的药物中的应用。 9.权利要求1-5中任一项所述的组合物在制备WNT/ -catenin通路抑制剂中的应用。 10.权利要求1-5中任一项所述的组合物在制备WNT/ -catenin通路信号素失活剂中的 应用。 权利要求书 1/1 页 2 CN 111773301 A 2 一种含芦荟提取物的组合物及其应用 技术领域 0001 本发明属于医药领域, 具体涉及一种含芦荟提取物的。
5、组合物及其应用。 背景技术 0002 癌症是严重威胁我国乃至全世界人民生命的常见疾病, 位居死亡原因第一。 近年 来, 尽管肿瘤早期诊断、 早期发现技术有了很大进步, 标准的化疗和放疗已在临床上应用了 几十年, 但大多数临床中晚期患者的整体生存率仍无明显改善。 正常细胞演变为癌细胞, 就 会具备癌症细胞的6个基本特征: 维持增殖的信号, 避免增殖抑制, 抵抗细胞死亡, 诱导血管 生成, 无限制的复制, 激活侵袭和转移。 整个癌变过程可以分为癌症发生阶段、 癌症进展阶 段和癌症转移阶段。 被诊断出的癌症患者大部分已是中期或晚期, 癌细胞的大量存在、 复 制、 转移, 威胁着患者的生命, 但目前仍。
6、然没有很好的药物能够有针对性的杀死癌细胞, 但 对正常细胞损伤较小。 0003 WNT/ -catenin信号通路参与多种发育过程以及许多癌症的发生和发展, 特别是 结直肠癌和肝癌。 经典WNT信号通路中的关键调控步骤包括 -catenin的磷酸化, 泛素化和 随后的降解过程。 该过程涉及一个专门的细胞质破坏复合物, 该复合物由支架蛋白Axin和 瘤性息肉病(APC)、 糖原合成酶激酶-3 / (GSK-3)、 酪蛋白激酶1(CKI)这三个核心成分组 成。 一旦WNT配体与受体复合物结合形成一种七跨膜结构域的fryzzle蛋白或LDL受体相关 蛋白家族的单程跨膜蛋白(特别是LRP5或LRP6)。
7、, 信息转导后会抑制Axin介导的 -catenin 磷酸化, 而使未磷酸化的 -catenin积聚并传送至细胞核, 从而与TCF/LEF(T细胞因子/淋巴 增强因子)家族的DNA结合蛋白形成复合物并激活WNT靶基因表达。 而目前针对WNT/ - catenin信号通路的药物少, 且未体现出卓越的效果。 0004 因此, 亟需提供有一种抑制癌细胞中的WNT/ -catenin通路的组合物。 发明内容 0005 本发明旨在至少解决上述现有技术中存在的技术问题之一。 为此, 本发明提出一 种含芦荟提取物的组合物, 能够抑制癌细胞中的WNT/ -catenin通路。 0006 一种含芦荟提取物的组合。
8、物, 包括芦荟提取物和喜树碱及其衍生物。 0007 优选的, 所述组合物, 包括芦荟提取物和喜树碱衍生物; 进一步优选的, 所述喜树 碱衍生物为10-羟基喜树碱(HPT)。 0008 优选的, 在所述组合物中, 所述芦荟提取物的含量为50-400ug/ml, 所述喜树碱及 其衍生物的含量为2.5-50uM; 进一步优选的, 所述芦荟提取物的含量为50-150ug/ml, 所述 喜树碱及其衍生物的含量为5-30uM。 0009 优选的, 所述含芦荟提取物的组合物, 所述芦荟提取物采用水或/和醇浸提得到; 进一步优选的, 所述芦荟提取物采用水浸提得到。 0010 一种药物, 包括所述的含芦荟提取物。
9、的组合物和辅料。 0011 所述药物为要学上可接受的任意剂型, 如片剂、 粉剂或胶囊剂。 说明书 1/9 页 3 CN 111773301 A 3 0012 所述含芦荟提取物的组合物在制备抗癌的药物中的应用; 优选的, 所述含芦荟提 取物的组合物在制备抗肝癌的药物中的应用。 0013 所述组合物在制备WNT/ -catenin通路抑制剂中的应用。 0014 所述组合物在制备WNT/ -catenin通路信号素失活剂中的应用。 0015 相对于现有技术, 本发明的有益效果如下: 0016 本发明中所述含芦荟提取物的组合物, 包括芦荟提取物和喜树碱及其衍生物, 芦 荟提取物和喜树碱及其衍生物联合使。
10、用能够增加对癌细胞中DNA损伤, 上调H2AX蛋白水 平, 阻滞细胞周期于S期, 诱导细胞凋亡和抑制WNT/ -catenin信号通路, 两者协同增效, 增 强癌细胞的细胞毒活性, 以达到抗癌的作用。 附图说明 0017 图1为实施例1、 实施例2中细胞毒性MTT试验结果图; 0018 图2为实施例1、 实施例2中HepG2细胞彗星分析结果图; 0019 图3为实施例1、 实施例2中HepG2细胞周期分析图; 0020 图4为实施例1、 实施例2中HepG2细胞凋亡分析图; 0021 图5为实施例1、 实施例2中HepG2细胞中的WNT/ -catenin通路的蛋白水平图; 0022 其中, 。
11、*P0.05, *P0.01, 与对照组相比; P0.05, #P0.01, 与HPT组相比。 具体实施方式 0023 为了让本领域技术人员更加清楚明白本发明所述技术方案, 现列举以下实施例进 行说明。 需要指出的是, 以下实施例对本发明要求的保护范围不构成限制作用。 0024 以下实施例中所用芦荟提取物购买于一方制药有限公司(中国广州)。 其他的原 料、 试剂或装置如无特殊说明, 均可从常规商业途径得到, 或者可以通过现有已知方法得 到。 0025 实施例1 0026 称量芦荟提取物, 在过滤提取物之前, 将芦荟提取物在80的水中超声提取30分 钟。 芦荟提取液使用前储被存在-20备用。 取。
12、HPT, 与芦荟提取物混合制备成组合物1, 其中 HPT的浓度为10uM, 芦荟提取物的含量为50ug/ml。 0027 实施例2 0028 称量芦荟提取物, 在过滤提取物之前, 将芦荟提取物在80的水中超声提取30分 钟。 芦荟提取液使用前储被存在-20备用。 取HPT, 与芦荟提取物混合制备成组合物2, 其中 HPT的浓度为10uM, 芦荟提取物的含量为100ug/ml。 0029 产品效果测试 0030 将实施例1和实施例2制得的组合物进行如下试验。 0031 材料和方法 0032 1.药品和试剂 0033 人肝细胞癌HepG2细胞由美国菌种保藏中心(ATCC)(美国马里兰州罗克维尔/ 。
13、Rockville,MD,USA)提供; 0034 DMEM培养基、 青链霉素溶液、 胎牛血清(FBS)和0.25胰酶EDTA溶液均购自GIBCO 说明书 2/9 页 4 CN 111773301 A 4 Invitrogen公司(美国加利福尼亚州卡尔斯巴德/Carlsbad,CA,USA); 0035 10-羟基喜树碱(HPT)购自成都曼思特生物科技有限公司(中国成都); 0036 超纯水自Milli-Q纯水系统(美国马萨诸塞州贝德福德/Bedford ,MA ,USA, Millipore公司)获得; 0037 质谱级甲醇, 乙腈和乙酸购自Anaqua Chemical Supply公司(。
14、美国得克萨斯州休 斯顿/Houston,TX,USA); 0038 稳定同位素标记的13C1015N5-三磷酸腺苷(ATP13C15N)、 二甲基亚砜(DMSO), 胰 酶-EDTA溶液和3-(4 ,5)-二甲基-2噻唑-2,5-二苯基溴化四氮唑(MTT)购自Sigma Aldrich Chemical公司(美国密西根州圣路易斯/St.Louis,MO,USA); 0039 30氢氧化铵水溶液(NH4OH), 乙酸铵(NH4OAc)购自Sigma-Aldrich公司(美国密西 根州圣路易斯/St.Louis,MO,USA)。 0040 HPLC质量级甲醇、 乙腈和乙酸(AcOH)购自JT Ba。
15、ker Chemical公司(美国新泽西州 菲利普斯堡/Phillipsburg,NJ,USA); 0041 甲酸购自Fisher Scientific公司(美国新泽西州费尔劳恩/Fair Lawn,NJ,USA); 乙醚购自Tedia公司(美国俄亥俄州费尔菲尔德/Fairfield,OH,USA); 0042 四氟硼酸(HBF4)和三甲基甲硅烷基重氮甲烷(TMSD; 在己烷中为2M)由Alfa Aesar 公司提供(美国马萨诸塞州沃德希尔/Ward Hill, MA, USA); 0043 色谱柱Sepax GP-C18(2.1150mm, 1.8 m)从Sepax Technologies。
16、获得(美国特拉 华州纽瓦克/Newark, DE, USA)。 0044 2.植物原材料 0045 本申请中的库拉索芦荟/Aloe barbadensis miller为干燥的芦荟渗出液, 购买于 一方制药有限公司(中国广州)。 0046 3.芦荟提取物的LC-MS/MS分析 0047 芦荟素A(98)、 芦荟素B(98)、 芦荟宁(98)和芦荟苦素(98)的标 准物购自宝鸡市辰光生物有限公司(中国宝鸡); 超纯水自Milli-Q纯水系统(美国马萨诸塞 州贝德福德/Bedford,MA,USA,Millipore公司)获得; 质谱级乙腈购自Anaqua Chemical Supply公司(美国。
17、得克萨斯州休斯顿/Houston,TX,USA)。 0048 芦荟提取物在Thermo Fisher TSQ LC-MS/MS系统上进行, 该系统由Accela自动进 样器, Accele泵和Quantum Access三重四极杆质谱仪组成(Thermo Fisher Scientific公 司, 美国加利福尼亚州圣何塞/San Jose,CA,USA)。 使用Sepax GP-C18色谱柱(2.1mm 150mm, 1.8 m, Thermo Fisher Scientific公司,美国加利福尼亚州圣何塞/San Jose,CA, USA)进行色谱分离。 洗脱液为30的乙腈水, 液体流速设定。
18、为0.3mL/min, 柱温保持在35, 在350的温度和15psi的辅助气压下, 将负离子模式下的离子喷雾电压设置为3000V。 如表 1所示, 使用质谱多反应监测(MRM)技术进行定量分析。 0049 表1.质谱多反应监测(MRM)的设置 0050 说明书 3/9 页 5 CN 111773301 A 5 0051 0052 4.细胞培养 0053 在添加了10胎牛血清(FBS), 100单位/mL青霉素, 100 g/mL链霉素的DMEM培养基 中培养HepG2细胞, 将其置于37、 5CO2条件下的培养箱中孵育。 将HepG2细胞接种于 100mm20mm的培养皿中(Corning I。
19、nc, 美国纽约州康宁/Corning,NY,USA)。 过夜培养后, 将细胞分为以下几组: 对照组(C), 将细胞与单独的培养基一起孵育48小时; 10-羟基喜树碱 组(HPT), 首先将细胞与培养基一起孵育24小时, 然后将其暴露于10.0 M的HPT中培养24小 时; 芦荟提取物组(Aloe), 将细胞暴露于50.0 g/mL或100.0 g/mL的芦荟提取物中48小时; 组合组(包括组合物1和组合物2), 将细胞用组合物1和组合物2分别处理24小时。 在细胞收 获当天, 将额外的细胞培养皿用于细胞计数, 以使核苷酸库标准化, 并通过台盼蓝拒染实验 测定存活率。 0054 5.细胞毒性试。
20、验 0055 通过细胞毒性MTT实验测定确定不同组对HepG2细胞的抑制作用。 将HepG2细胞以1 104细胞/孔的密度接种在96孔板中(LabServ,Thermo Fisher Scientific Co,中国北 京)。 孵育后, 将它们用一定浓度的HPT, 芦荟或组合物(包括组合物1和组合物2)处理24、 48和72小时。 将MTT溶液(培养基中最终浓度为0.5mg/mL)加入到每个孔中, 并进一步温育4 小时。 移走培养基, 向每个孔中加入100 L DMSO以溶解紫色结晶甲臜。 使用微孔板UV/VIS分 光光度计在570nm处测量吸光度(Infinite M200 PRO,Teca。
21、n Austria GmbH 5082,奥地利 格勒迪希/Austria), 参考波长为650nm。 使用血细胞计数器测定细胞数。 通过 GraphPad Prism软件(GraphPad Software公司, 美国加利福尼/CA,USA)计算IC 50值最大 抑制浓度的一半(50)。 细胞存活率()OD(处理)-OD(空白)/OD(对照, 未处理)-OD (空白)100。 药物相互作用通过组合指数(CI)方法进行评估, 而CI1分别 表示协同作用, 累加作用或拮抗作用。 CI值通过CompuSyn软件计算(ComboSyn公司, 美国纽 约/NY,USA)。 0056 6.结晶紫染色试验 。
22、0057 为了直观地观察药物对细胞的功效, 通过结晶紫染色法评估细胞存活率。 简而言 之, 用10.0 M HPT培养基、 50.0 g/mL芦荟培养基、 100.0 g/mL芦荟培养基或组合物培养基 (包括组合物1和组合物2)处理6孔板中的HepG2细胞(2.0105细胞/孔)。 随后, 将细胞用 0.5结晶紫染色。 PBS冲洗后, 使用Quantity One软件克隆计数功能对菌落进行计数(Life Science Research&Clinical Diagnostics ,Bio-Rad Ltd, 美国加利福尼亚州/ California,USA)。 0058 7.免疫荧光试验 005。
23、9 HepG2细胞生长在6孔板的玻璃圆形培养片上, 加入HPT, 芦荟及组合组(包括组合 物1和组合物2), 分别孵育48小时。 处理结束时, 用PBS洗涤细胞并在室温下用4多聚甲醛 固定细胞15分钟。 随后, 将细胞用PBS洗涤三次, 并于室温下在5(w/v)BSA中孵育30分钟以 说明书 4/9 页 6 CN 111773301 A 6 封闭细胞, 然后与相应的一抗gamma H2A.X在4下孵育12小时(phospho S139)9F3 (ab26350),稀释比例1:100;英国剑桥/Cambridge,UK)。 然后, 在用PBS洗涤3次 后, 将细胞与合适的二抗山羊抗小鼠IgG H。
24、&594(稀释比例1:500, 英国剑 桥/Cambridge,UK)在5BSA中于室温下黑暗中孵育1小时。 最后, 使用1 g/mL的蓝色荧光 DAPI(4,6-二脒基-2-苯基吲哚; Sigma-Aldrich)对核DNA进行染色。 使用荧光显微镜进行 成像分析(Leica Microsystems公司, 德国韦茨拉尔/Wetzlar,Germany)。 0060 8.HPT诱导的DNA损伤和彗星试验 0061 将HepG2细胞以4105/孔的密度接种在6孔板中, 并孵育24小时。 将细胞分为以下 几组: 对照组中仅与培养基一起孵育的细胞, 以及在50.0 g/mL或100.0 g/mL芦。
25、荟中预处理 24h后暴露于40.0 M HPT 1h的细胞。 对照组, 仅与培养基一起孵育的细胞; 伤害组, 在50.0 g/mL或100.0 g/mL芦荟中预处理24h后暴露于40.0uM HPT 1h的细胞。 HPT处理1小时后, 用 冷PBS洗涤细胞并收获, 根据以前发表的方法通过碱性彗星电泳测试细胞DNA损伤。 用荧光 显微镜(Leica Microsystems公司, 德国韦茨拉尔/Wetzlar,Germany)检测彗星。 通过彗星 图像分析系统(Globalebio公司, 中国北京)分析其图像。 总强度(DNA含量)、 尾巴长度、 尾巴 中的DNA百分比和尾矩这几个特征被用于评估。
26、DNA损伤的程度。 0062 9.细胞周期分析 0063 将细胞以4.0105/孔一式两份地接种在6孔培养板中, 并与指示浓度的HPT, 芦荟 或组合物(包括组合物1和组合物2)孵育48小时。 然后收获它们, 并在4下用70(v/v)的 冷乙醇固定过夜。 通过离心收集固定的细胞, 重新悬浮于PBS中, 并与5mg/mL的碘化丙啶 (Sigma-Aldrich)和10mg/mL的核糖核酸酶A(Sigma-Aldrich)在室温下黑暗条件中孵育30 分钟。 然后用流式细胞仪(MuseTM cell analyzer,Merck Millipore, 德国达姆施塔特/ Darmstadt,Germa。
27、ny)分析细胞。 最后, 使用Modfit软件(Verity Software House, 美国)计 算不同阶段(G0/G1、 S和G2/M)的细胞百分比。 0064 10.凋亡检测 0065 使用MuseTM Annexin V&Dead Cell Kit(德国达姆施塔特/Darmstadt,Germany) 对细胞凋亡进行定量。 通过胰蛋白酶消化得到HPT组, 芦荟组或组合组(包括组合物1和组合 物2)细胞, 用冷PBS洗涤两次后重悬于1FBS中。 加入MuseTM Annexin V&Dead Cell对细胞 染色, 然后通过流式细胞仪(MuseTM cell analyzer,Mer。
28、ck Millipore, 德国达姆施塔特/ Darmstadt,Germany)进行分析。 0066 11.蛋白质印迹分析 0067 收集每组细胞 , 并在RIPA缓冲液中进行提取和裂解(Cell Signaling Technologies公司, 美国马萨诸塞州贝弗利/Beverly,MA,USA)。 使用Bradford试剂(Bio- Rad Laboratory,加利福尼亚州赫拉克勒斯/Hercules,CA,USA)测定蛋白质浓度。 简而言 之, 将细胞裂解液与5x SDS上样缓冲液(4:1, v/v)混合,并盖紧盖子在100下加热5分钟。 将这样处理过的裂解物(20 g)进行10十。
29、二烷基磺酸钠道-聚丙烯酰内胺凝胶电泳(SDS- PAGE)。 电泳后, 将来自SDS-PAGE的细胞提取物转移至硝酸纤维素膜(Merck Millipore, 美 国), 与Wnt/ -Catenin激活靶标抗体样品试剂盒#8655(稀释比1: 1000; Cell Signaling Technology)、 兔 -Catenin(稀释比1:1000; Cell Signaling Technology)、 鼠gamma H2A.X(phospho S139)9F3(稀释比1:1000;英国剑桥)、 兔Caspase-3抗体(稀 说明书 5/9 页 7 CN 111773301 A 7 释比。
30、1:1000; Cell Signaling Technology公司, 美国马萨诸塞州丹弗斯)、 兔caspase-8 抗体(稀释比1:1000; Cell Signaling Technology)、 兔caspase-9抗体(稀释比1: 1000; Cell Signaling Technology)、 小鼠PARP抗体(稀释比1:1000;英国剑 桥)、 兔Bak抗体(稀释比1: 1000;英国剑桥)、 小鼠Bax抗体(稀释比1:1000, 英国剑桥)及 -Actin抗体(稀释比1:2000, Santa Cruz Biotechnology, 美国加 利福尼亚州)在4下过夜。 在上述。
31、步骤之后, 将其与HRP偶联抗体(稀释比1: 10000; Cell Signaling Technology)共同孵育1小时。 通过增强的化学发光试剂(Invitrogen, 英国苏格 兰佩斯利)显示蛋白质谱带, 使用Image J 1.46r软件(National Institutes of Health, 美国马里兰州贝塞斯达)分析谱带。 0068 结果分析 0069 1.芦荟提物物的LC-MS/MS分析 0070 通过LC-MS/MS分析芦荟水提取物的成分。 通过对比参考化合物, 根据芦荟素A、 芦 荟素B、 芦荟宁和芦荟苦素的保留时间和裂解方式, 对其进行了鉴定。 本申请中芦荟提取物。
32、 中的芦荟A、 芦荟B、 芦荟宁和芦荟苦素作为标记物被进一步定量, 它们的含量分别为 1249.0、 1080.0、 23.8和4.3 g/g。 0071 2.芦荟提取物联合HPT在HepG2细胞中发挥协同作用 0072 通过细胞毒性MTT(3-4,5-二甲基-2-噻唑-2,5二苯基四唑溴化物)试验测定芦 荟的固有细胞毒性。 用不同浓度的芦荟(0-200.0 g/mL)处理HepG2细胞不同的时间(24、 48、 72h)。 0073 图1中A表示用不同浓度的芦荟提取物(0-200.0 g/mL)处理HepG2细胞24、 48和72 小时后的细胞存活率, 横坐标表示芦荟提取物的浓度, 纵坐标表。
33、示细胞存活率, 由图可知, 芦荟提取物的浓度100.0 g/mL时对HepG2细胞无明显的毒性作用, 即使作用较长时间, 也 无明显效果, 90以上的细胞能够存活。 0074 图1中B表示采用HPT单独处理或采用组合物1(10uM HPT和50ug/ml芦荟提取物)、 组合物2(10uM HPT和100ug/ml芦荟提取物)处理48小时的细胞存活率; 由图可知, HPT单独 处理或采用组合物1、 组合物2处理, 会导致HepG2细胞的存活率降低, 组合物处理后HepG2细 胞的存活率更低, HPT和芦荟提取物具有协同增效的作用。 0075 图1中C表示各处理组细胞形成的菌落, 培养皿1表示对照。
34、组, 不添加芦荟提取物和 HPT, 培养皿2表示用50ug/ml的芦荟提取物处理, 培养皿3表示用100ug/ml的芦荟提取物处 理, 培养皿4表示用10uM的HPT处理, 培养皿5表示用10uM的HPT和50ug/ml的芦荟提取物共同 处理, 培养皿6表示用10uM的HPT和100ug/ml的芦荟提取物共同处理; 由图可知, 对照组和芦 荟提取物单独处理组, 细胞生长良好, 用10uM的HPT处理会影响细胞的生长, 而组合物处理 会明显影响细胞的生长。 0076 由图中D表示菌落形成试验中各组的细胞数形成菌落的细胞计数, 横坐标为各处 理组, 纵坐标为细胞数, 由图可知, 芦荟-HPT组合显。
35、著降低了HepG2细胞的生长。 0077 通过组合指数(CI)方法评估芦荟提取物和HPT之间的相互作用, 其中CI1分别表示协同作用, 累加作用或拮抗作用。 HPT单独处理和组合物处理的IC 50值(最 大抑制浓度的一半)和CI值如表1。 由表中IC50和组合指数(CI)值可知, 芦荟提取物和HPT在 HepG2细胞中有明显的协同作用。 说明书 6/9 页 8 CN 111773301 A 8 0078 表1.芦荟提取物和组合物对HepG2细胞的细胞毒性评估 0079 DrugIC50CI value HPT41.58.0_ 50.0 g/mL Aloe+HPT(组合物1)10.42.9*0.。
36、4470.101 100.0 g/mL Aloe+HPT(组合物2)2.61.4*0.3110.001 0080 注: *P0.05, *P0.01, 表示与HPT组有显著性差异。 0081 3.芦荟-HPT组合增加HepG2细胞的DNA损伤 0082 HPT是一种DNA合成抑制剂, 可以抑制DNA拓扑异构酶 , 并在DNA复制过程中造成 DNA损伤。 因此, 由DNA链断裂引起的DNA损伤程度可反映HPT在癌细胞中的细胞毒性。 为了便 于DNA损伤分析, 对经过不同处理的HepG2细胞进行彗星试验。 0083 图2中A为各组的彗星分析, 通过荧光显微镜(原始放大倍数: 200)获得的彗星试 。
37、验图像, 图中分别为对照组, 不添加芦荟提取物和HPT; 用50ug/ml的芦荟提取物处理; 用 100ug/ml的芦荟提取物处理; 用40uM的HPT处理; 用10uM的HPT和50ug/ml的芦荟提取物共同 处理; 用10uM的HPT和100ug/ml的芦荟提取物共同处理。 由图可知, 与对照组相比, 单独采用 芦荟提取物处理的组的尾值没有差异; 单独40.0 M HPT组孵育1h后, 能观察到HepG2细胞中 的尾巴; 在芦荟+HPT组合中可发现更长的尾巴。 0084 图2中B为尾巴值分析图, 横坐标为各处理组, 纵坐标为尾巴长度; 图2中C为尾矩值 分析图, 横坐标为各处理组, 纵坐标。
38、为尾矩值; 由图可知, 与对照组相比, 单独采用芦荟提取 物处理的组的尾值没有差异; 单独40.0 M HPT组孵育1h后, 能观察到HepG2细胞中的尾巴; 在芦荟+HPT组合中可发现更长的尾巴长度和更高的尾矩值。 0085 图2中D为DAPI和H2AX在HepG2细胞中的免疫荧光染色(原始放大倍数: 400), 从左往右依次为DAPI、 H2AX和Merge成像(Merge为DAPI和H2AX的成像叠加); 免疫荧光 染色结果显示, 芦荟提取物与HPT组合可在HepG2细胞中以剂量依赖性方式增加H2AX的水 平。 0086 图2中E为H2AX在蛋白印迹法中的表达, 其中横向从左往右依次为对。
39、照组, 不添 加芦荟提取物和HPT; 用100ug/ml的芦荟提取物处理; 用15uM的HPT处理; 用15uM的HPT和 50ug/ml的芦荟提取物共同处理; 用15uM的HPT和100ug/ml的芦荟提取物共同处理。 和单独 的HPT组相比, 采用HPT和芦荟提取物共同处理组(即组合物组)的H2AX蛋白水平明显更 高。 0087 由图2可知, 芦荟提取物与HPT对DNA损伤的协同作用与H2AX的累积程度有关。 0088 10-羟基喜树碱(HPT)是喜树碱衍生物, 是拓扑异构酶I的特异性抑制剂, 可在DNA 切割后与DNA和核拓扑异构酶I酶之间形成的可裂解复合物结合并使其稳定, 从而防止DN。
40、A 重新密封并使可裂解复合物积聚。 因此, 可裂解的复合物阻碍了暂时性DNA单链断裂的修复 并阻止了DNA复制, 导致致命的DNA双链断裂, 进而激活了内切核酸酶, 引发了进一步的DNA 断裂并最终导致了细胞死亡。 彗星试验(也称为单细胞凝胶试验(SCG)是一个检测单细胞 DNA链断裂的灵敏且快速的方法。 彗尾的长度与破坏程度呈正相关, 彗星试验的数据证明, 尽管芦荟的单独使用对DNA损伤没有影响, 但芦荟能够以剂量依赖的方式刺激HPT诱导的 DNA损伤。 0089 H2AX是一个分子量为14kD的基础组蛋白, 也是H2组蛋白家族的成员。 这种核蛋 说明书 7/9 页 9 CN 1117733。
41、01 A 9 白是在细胞周期的G1和S期合成的, 并对免疫球蛋白转换区域之间的重组有着重要作用。 双 链DNA断裂后, H2AX在139号丝氨酸上被磷酸化。 采用所述组合物处理后, 形成的H2AX增 加, 因此进一步说明表明芦荟提取物显著促进了HepG2细胞中HPT诱导的DNA双链断裂。 本发 明中芦荟提取物和HPT组合物对诱导HepG2细胞中DNA双链断裂具有协同增效的作用。 0090 4.芦荟+HPT对细胞周期阻滞的影响 0091 为了研究HPT对HepG2细胞的抗增殖作用是否由细胞周期阻滞触发, 使用碘化丙啶 (PI)染色的流式细胞仪分析经芦荟提取物、 HPT单独处理以及组合物处理48小。
42、时后的细胞 周期分布。 0092 图3为不同阶段的HepG2细胞百分比, 横坐标为各组(分别为对照组, 不添加芦荟提 取物和HPT; 用50ug/ml的芦荟提取物处理; 用100ug/ml的芦荟提取物处理; 用40uM的HPT处 理; 用10uM的HPT和50ug/ml的芦荟提取物共同处理; 用10uM的HPT和100ug/ml的芦荟提取物 共同处理)在不同时期, 纵坐标为细胞百分比。 0093 细胞周期进程的失调和细胞凋亡是癌症的常见特征, 由图3可知, 与对照组相比, HepG2细胞暴露于HPT导致G0/G1期减少, 同时G2/M期增加。 经芦荟提取物和HPT联合处理的 细胞, S期细胞的。
43、比例增加, 而G2/M期细胞的比例减少。 此外, 与HPT单独处理组相比, 经组合 物处理后可引起G0/G1期显著积累和G2/M期显著消耗。 结果表明, 与对照组相比, 芦荟提取 物和HPT联合处理显著诱导HepG2细胞S期阻滞。 0094 5.芦荟-HPT诱导半胱氨酸蛋白酶依赖性凋亡 0095 为了鉴定HPT-芦荟的生长抑制作用是否是由凋亡引起的, 通过Annexin V&Dead Cell双重试剂染色的流式细胞仪证实了凋亡的发生。 0096 图4中A为处理前后凋亡细胞的分布图, 图中横坐标分别为各组(分别为对照组, 不 添加芦荟提取物和HPT; 用50ug/ml的芦荟提取物处理组; 用10。
44、0ug/ml的芦荟提取物处理组; 用40uM的HPT处理组; 用10uM的HPT和50ug/ml的芦荟提取物共同处理组; 用10uM的HPT和 100ug/ml的芦荟提取物共同处理组)在早期、 中期和晚期, 纵坐标为细胞百分比。 由图4中A 可知, 暴露于HPT后(有或没有芦荟提取物), 早期和晚期凋亡细胞的百分比显著增加。 因为 半胱氨酸蛋白酶激活被认为是肿瘤细胞中常见的凋亡途径。 蛋白印迹法被用于评估半胱氨 酸蛋白酶在细胞凋亡中的功能作用。 0097 图4中B为通过蛋白印迹法分析评估PARP、 caspase-3、 caspase-9、 Cleaved- caspase-9和Bax的水平,。
45、 -肌动蛋白( -actin)用作负载对照, 图中, 横向依次表示采用对 照组, 不添加芦荟提取物和HPT; 用100ug/ml的芦荟提取物处理; 用15uM的HPT处理; 用15uM 的HPT和50ug/ml的芦荟提取物共同处理; 用15uM的HPT和100ug/ml的芦荟提取物共同处理。 图4中C表示PARP、 Cleaved-PARP、 caspase-3、 caspase-9、 Cleaved-caspase-9和Bax的相对 表达水平代表图, 横坐标为各组的PARP、 Cleaved-PARP、 caspase-3、 caspase-9、 Cleaved- caspase-9和Bax。
46、的相对表达, 纵坐标为相对表达水平值。 0098 由图4中B和C可知, 经芦荟提取物+HPT共同处理细胞中的PARP、 caspase-9和Bax明 显降低, 而Cleaved-PARP、 Cleaved-caspase-9和caspase-3被强烈激活。 这些结果证实芦荟 提取物可以通过半胱氨酸蛋白酶依赖性机制促进HPT诱导的细胞凋亡。 0099 6.芦荟-HPT组合物抑制HepG2细胞中的WNT/ -catenin通路 0100 为了进一步了解芦荟和HPT协同作用的机理, 通过蛋白印迹实验研究WNT/- 说明书 8/9 页 10 CN 111773301 A 10 catenin信号通路蛋。
47、白。 0101 图5中A为通过蛋白印迹法评估WNT/ -catenin通路中的蛋白质水平图, 将 -actin 作为负荷对照, 图中横向依次为对照组, 不添加芦荟提取物和HPT; 用100ug/ml的芦荟提取 物处理; 用15uM的HPT处理; 用15uM的HPT和50ug/ml的芦荟提取物共同处理; 用15uM的HPT和 100ug/ml的芦荟提取物共同处理, 纵向为各蛋白; 图5中B为WNT/ -catenin通路蛋白的相对 表达水平图, 横坐标为各组(对照组, 不添加芦荟提取物和HPT; 用100ug/ml的芦荟提取物处 理; 用15uM的HPT处理; 用15uM的HPT和50ug/ml。
48、的芦荟提取物共同处理; 用15uM的HPT和 100ug/ml的芦荟提取物共同处理)的Met、 -catenin、 c-Jun、 c-Myc癌基因、 MMP7蛋白, 纵坐 标为相对表达水平值。 0102 典型WNT通路的抑制导致 -catenin向细胞核转运的停止, 并抑制了核TCF/LEF转 录因子的活性, 从而破坏Wnt依赖性信号传导中的靶基因, 包括CD44、 cyclin D1、 c-Jun、 LEF1、 Met、 MMP-7、 c-Myc和TCF1/TCF7。 由图5中A、 B可知, 该芦荟提取物和HPT组合物有效诱 导了Met、 -catenin和c-Myc表达蛋白水平的下调; 同。
49、时共同作用后, 原癌基因c-Jun蛋白的 表达水平呈剂量依赖性上调。 该芦荟提取物和HPT组合物的协同增效作用与细胞WNT/ - catenin信号通路的调节有关, 该组合物能够抑制HepG2细胞中的WNT/ -catenin通路。 说明书 9/9 页 11 CN 111773301 A 11 说明书附图 1/7 页 12 CN 111773301 A 12 图1 说明书附图 2/7 页 13 CN 111773301 A 13 说明书附图 3/7 页 14 CN 111773301 A 14 图2 说明书附图 4/7 页 15 CN 111773301 A 15 图3 说明书附图 5/7 页 16 CN 111773301 A 16 图4 说明书附图 6/7 页 17 CN 111773301 A 17 图5 说明书附图 7/7 页 18 CN 111773301 A 18 。
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